AmphibiaWeb-Agalychnis callidryas

Descrição

Agalychnis callidryas, o sapo de olhos vermelhos, é um sapo esbelto, colorido e de tamanho médio. As fêmeas medem até 77 mm e os machos até 59 mm (Savage 2002). Este sapo tem superfícies dorsais verde-folha a verde escuro; flancos azuis, roxos ou acastanhados escuros, com barras verticais ou diagonais de cor creme ou amarelo; braços superiores azuis ou alaranjados; coxas azuis ou alaranjadas nas superfícies anterior, posterior e ventral; mãos e pés alaranjados, exceto os dígitos mais externos em cada um; um ventro branco; e olhos vermelhos protuberantes, com pupilas verticais (Savage 2002; Leenders 2001; Duellman 2001). As costas às vezes são marcadas com linhas verdes escuras tranverse fracas (especialmente em indivíduos da Nicarágua ou Costa Rica) ou pequenos pontos brancos (Duellman 2001). O número médio de barras nos flancos aumenta nas populações de norte a sul, com uma média de 5,0 barras no México e uma média de 9,0 barras no Panamá (Duellman 2001). Em algumas populações da parte média da Cordilheira (Nicarágua e Costa Rica, no lado Caribenho), muitas vezes há uma faixa amarelada longitudinal contínua conectando as extremidades superiores das barras verticais e separando os flancos azuis do dorso verde (Duellman 2001).

a pele é lisa tanto dorsalmente quanto ventralmente (Savage 2002). Agalychnis callidryas tem uma cabeça arredondada e um focinho truncado quando visto de cima (Duellman 2001). Os olhos são grandes e direcionados para os lados (Leenders 2001). Quando este sapo fecha os olhos, as pálpebras inferiores transparentes marcadas com uma rede de ouro são aparentes (Leenders 2001). Tem tímpanos distintos (Savage 2002). O corpo é esbelto e um pouco achatado (Leenders 2001). Os dedos são curtos, com cerca de meia teia e têm discos moderadamente grandes (Duellman 2001). Os dedos dos pés são curtos, cerca de dois terços palmados, e também têm discos moderadamente grandes que são quase tão grandes quanto os dos dedos, com uma dobra estreita que vai do calcanhar ao disco do quinto dedo do pé (Duellman 2001; Savage 2002). Os machos adultos têm fendas vocais emparelhadas e um único saco vocal subgular mediano interno, bem como uma almofada nupcial marrom acinzentada na base de cada polegar (Savage 2002).

froglets Jovens (pelo menos do Panamá) são capazes de mudar de cor; eles são verdes de dia e mudam para marrom arroxeado ou avermelhado à noite (Pyburn 1963). Além disso, os frangos jovens têm olhos amarelos em vez de vermelhos e flancos de cores mais claras sem barras esbranquiçadas (Pyburn 1963). A coloração do olho vermelho aparece primeiro na periferia do olho em cerca de duas semanas após a metamorfose, e ao longo de um período de vários dias se espalha para dentro para tornar a íris totalmente vermelha (Starrett 1960).

os girinos Agalychnis callidryas são grandes, com um corpo robusto que pode medir 48 mm de comprimento total no estágio 34 (Savage 2002). A cauda e as barbatanas caudais são de tamanho moderado, com a ponta da cauda se estreitando até um flagelo fino (Savage 2002). O espiráculo é sinistral e lateroventral, enquanto o respiradouro é dextral (Savage 2002). Olhos e narinas são dorsolaterais (Savage 2002). A boca é anteroventral, com um disco oral pequeno e completo, bicos serrilhados e duas fileiras superiores mais três inferiores de dentículos (Savage 2002; Duellman 2001). A fileira de dentículos logo acima da boca tem uma pequena lacuna medialmente (Savage 2002). As papilas labiais estão presentes no lábio inferior em uma a três fileiras lateral e ventral para a boca, e no lábio superior em uma a duas fileiras lateral para a boca, mas sem diretamente acima da boca (Duellman 2001). O corpo do girino é dorsalmente cinza-oliva, sombreando em um cinza azulado salpicado de marrom-oliva nas laterais e na parte inferior (Duellman 2001). A musculatura caudal Larval é um marrom acinzentado claro, enquanto as barbatanas caudais são transparentes, mas ambas são salpicadas de cinza escuro (Duellman 2001).

Distribuição e Habitat

distribuição nacional de AmphibiaWeb do banco de dados: Belize, Colômbia, Costa Rica, Guatemala, Honduras, México, Nicarágua, Panamá

Ver mapa de distribuição em BerkeleyMapper.
exibir dados Bd e Bsal (26 registros).

rãs de olhos vermelhos são distribuídas do México (Yucatán) ao Panamá, com um relatório isolado do Jardim Botânico de Cartagena na Colômbia (Savage 2002; Ruiz-Carranza et al. 1996). Eles habitam florestas úmidas, principalmente em terras baixas e, às vezes, em encostas premontanas de até 1.250 m (Leenders 2001).

história de vida, abundância, Atividade e comportamentos especiais
Agalychnis callidryas é noturno ativo. Este sapo é arbóreo e abriga na parte inferior de uma folha larga durante o dia e durante a estação seca, com membros dobrados por baixo do corpo (Leenders 2001). Também foi encontrado em bromélias, embora isso pareça ser raro (Duellman 2001). Esta espécie é abundante em habitat adequado (Stuart et al. 2008).

a reprodução ocorre durante a estação chuvosa (final de Maio a novembro), começando com as primeiras chuvas (Pyburn 1970). O acasalamento ocorre durante toda a estação chuvosa, mas é particularmente frequente em junho, e ocasionalmente atinge o pico novamente em outubro (Donnelly e Guyer 1994). Agalychnis callidryas geralmente prefere piscinas tranquilas de água com vegetação pendente como locais de reprodução (mas veja o parágrafo abaixo para outros tipos de locais usados); as piscinas podem ser permanentes, sazonais, mas duradouras ou temporárias (Warkentin et al. 2001; Pyburn 1970). Os machos fazem ligações agressivas, para impedir que outros machos se intrometam em seus territórios e anúncios, para atrair fêmeas (Gray e Rand 1997). A chamada agressiva soa como uma risada suave, e a chamada de anúncio é um “chack” ou “chack-chack”, repetido em intervalos de 8-60 segundos (Duellman 1967; Pyburn 1970; Duellman 2001). A frequência de chamada dominante varia de 1,5-2,5 kHz (cinza e Rand 1997). A chamada começa ao entardecer e é mais frequente à noite, especialmente durante as chuvas, como os machos anunciam para companheiros (Pyburn 1970). No entanto, Agalychnis callidryas também foram relatados para participar de um breve coro daybreak de chamadas de propaganda, a uma taxa de chamada muito maior do que a noite ou coros anúncio manhã (Gray e Rand 1997; Duellman 2001). Nas noites secas, os machos chamam de poleiros mais altos na Copa das árvores (Pyburn 1970). Em noites mais úmidas, ou quando as lagoas estão cheias, os machos começam a chamar do solo e de pequenas árvores e arbustos perto das bordas de lagoas ou remansos (Pyburn 1970). As chamadas são geralmente feitas de poleiros horizontais em folhas ou galhos, embora poleiros verticais em caules sejam usados ocasionalmente (Pyburn 1970). Os machos se movem com frequência durante a chamada, mudando suas posições e a direção da chamada (Pyburn 1970). Se as condições de precipitação ou nível de água forem suficientes, os machos descem para os locais de reprodução à beira da água e continuam chamando (Savage 2002). As fêmeas descem do dossel, aproximam-se dos machos chamadores selecionados em linha reta e permitem que o amplexus ocorra (Pyburn 1970). A descida geralmente ocorre lentamente de mão em mão, mas pára-quedismo também foi observado nesta espécie, tanto na natureza (Pyburn 1964), e em ensaios experimentais (Roberts 1994).

uma vez amplexed, uma fêmea carregará o macho amplectante na água e permanecerá lá por cerca de dez minutos (Pyburn 1970; D’Orgeixe e Turner 1995). Pyburn (1970) realizou experimentos mostrando que o objetivo desse comportamento é permitir que a fêmea absorva água através de sua pele, em sua bexiga, a fim de fazer a massa gelatinosa em torno da ninhada de ovos (Pyburn 1970). O par ampletante então se move para as árvores, enquanto a fêmea procura um local apropriado de deposição de ovos na vegetação que paira sobre a água (Pyburn 1970; D’Orgeixe e Turner 1995). Os ovos são geralmente depositados no lado superior (Pyburn 1970) ou no lado inferior (Fouquette 1968) de uma folha larga, tão alta quanto 12 pés sobre a água (Fouquette 1968). Plantas e árvores resistentes à beira da água são preferidas, mas a oviposição também pode ocorrer na vegetação emergente (Pyburn 1970). Embreagens de ovos também podem ocasionalmente ser depositadas em substratos como galhos ou arame (Pyburn 1970). Muito raramente os ovos serão depositados no chão (Pyburn 1970). Esta espécie também tem sido relatado para, por vezes, fazer uso de uma grande variedade de outros tipos de locais, tais como depressões cheias de água feitas por humanos e animais de carga, completamente sem vegetação pendente; videiras e pequenas árvores salientes cavidades de água em árvores caídas; videiras de maracujá crescendo acima de um fio de água de uma caneta de porco; ou anexando ovos à superfície interna dos dispositivos de coleta de água (McCranie et al. 2003). Ocasionalmente, as garras são encontradas com folhas parcialmente ou completamente dobradas sobre os ovos (Duellman 2001). Se o local de deposição estiver em cima de uma folha, os pais podem estar protegendo a embreagem do sol e dos predadores dobrando a borda da folha, onde adere à massa gelatinosa pegajosa ao redor dos ovos (Leenders 2001). Outros sapos reprodutores de folhas (Phyllomedusa iheringi, P. hypochondrialis e P. sauvagii) proteger suas garras dentro de folhas dobradas (Pyburn 1970). No entanto, Duellman (2001) adverte que, para Agalychnis callidryas, o dobramento ocasional pode ser devido à fixação dos ovos a tipos específicos de folhas mais propensas a curling, pois nem ele nem outros (por exemplo, Pyburn) observaram essa espécie enrolando ativamente as folhas durante a oviposição. Pyburn (1970), de fato, menciona especificamente que Agalychnis callidryas põe seus ovos em folhas abertas, em contraste com outras rãs filomedusinas.

a fertilização ocorre imediatamente após a deposição de óvulos (Leenders 2001). Ocasionalmente, pares ampletantes são atacados por machos solteiros, enquanto o intruso tenta desalojar o primeiro macho ou se prender ao lado ou nas costas do primeiro macho (Pyburn 1970; D’Orgeixe e Turner 1995). Essa estratégia às vezes é bem-sucedida, pois a análise molecular confirmou que a paternidade múltipla ocorre e que o segundo macho pode contribuir significativamente para a fertilização da embreagem na natureza (D’Orgeixe e Turner 1995). Briggs (2008) realizou testes de deslocamento masculino, onde um macho pelo menos 5 mm mais longo em SVL foi colocado em um balde coberto de 5 galões com um par recentemente amplexado e verificado a cada hora com luz vermelha, mas não descobriu que ocorreram aquisições masculinas. Ao longo de um período de estudo de três anos, Briggs (2008) relatou que os padrões de acasalamento variaram; rãs de olhos vermelhos mostraram evidências de acasalamento de tamanho sortido em um dos três anos e evidências de vantagem de acasalamento de machos grandes em outro dos três anos (o ano mais seco).

Garras consistem em cerca de 40 ovos verdes, cada um rodeado por uma clara geléia de revestimento, com cada ovo com um diâmetro de cerca de 3,7 mm de oviposição e de 5,2 mm quando maduro o suficiente para chocar (Pyburn 1963; Warkentin, 2000a; Warkentin 2002). Toda a embreagem é cercada em mais geleia, que é pegajosa e serve para aderir a embreagem ao substrato, bem como para evitar a dessecação (Pyburn 1963; Pyburn 1970; Warkentin et al. 2006). A cor da gema é consistente dentro das garras, mas varia entre as garras, do creme ao ouro, do Turquesa ao verde limão (Warkentin et al. 2006); à medida que as garras envelhecem, a gema muda de cor de verde pálido para amarelo (Duellman 2001). As fêmeas podem colocar várias garras (até cinco) em uma única noite (Pyburn 1970). Entre as garras, a fêmea carrega o macho amplificante para baixo na água novamente enquanto ela reidrata (D’Orgeixe e Turner 1995). É provável que a ovulação ocorra duas vezes durante a estação reprodutiva, uma vez que fêmeas grávidas contendo óvulos ovulados também tiveram números iguais de óvulos imaturos de meio tamanho ainda dentro do ovário, (Duellman 1963; Duellman 2001). Esta observação também se encaixa com o segundo pico no acasalamento às vezes observado perto do final da estação chuvosa (Donnelly e Guyer 1994). O sucesso da fertilização é alto, com Briggs (2008) observando 100% de fertilização em 54 das 56 embreagens experimentais e relatando que isso não diferiu de suas observações de campo.

como as garras dos ovos estão presas à vegetação que paira sobre a água, os girinos para incubação geralmente caem na água abaixo assim que eclodem (Pyburn 1963). Assim, a eclosão envolve uma mudança no habitat, de Aéreo para aquático, com uma mudança concomitante no conjunto de potenciais predadores e pressões de seleção (Warkentin 1995). Ocasionalmente, girinos para incubação também podem cair no chão (Pyburn 1970). Os girinos são capazes de viver fora da água por até 20 horas (Valerio 1971). Aqueles que caem no chão ou permanecem presos à folha ainda podem sobreviver se uma chuva posterior os lava em água parada, ou se eles são capazes de se jogar na água batendo com suas caudas (Pyburn 1963; Pyburn 1970).

Agalychnis callidryas mostra notável plasticidade adaptativa no momento da eclosão (Warkentin 1995). Em embreagens não perturbadas, os embriões se desenvolvem essencialmente de forma síncrona, mas eclodem de forma assíncrona, de seis a dez dias após a oviposição (Warkentin 1995; Warkentin 2005). A maioria dos embriões não perturbados eclodirá em cerca de sete dias, com a população do estudo no Panamá eclodindo em média em cerca de 6 a 7 dias e a população do estudo na Costa Rica eclodindo em cerca de 7 a 8 dias (Warkentin 2005). No entanto, se perturbados, os embriões de agalychnis callidryas podem sofrer eclosão precoce e relativamente síncrona, já em 4 dias no Panamá (Warkentin 2000b) ou 5 dias na Costa Rica (Warkentin 1995). A eclosão acelerada pode ocorrer em embreagens inteiras ou pequenos grupos de ovos dentro de uma embreagem, em resposta a pelo menos quatro riscos naturais diferentes: ataque de cobra (Warkentin 1995), ataque de vespa (Warkentin 2000b), infestação de fungos (Warkentin et al. 2001), e inundações ou submersão (Pyburn 1963; Warkentin 2002). A hipóxia da exposição a misturas de gases hipóxicos também induz a eclosão precoce (Warkentin 2002). Ataque de fungos, inundações e hipóxia resultam em eclosão precoce mais gradual do que ameaça imediata de predação (Warkentin 2000b).

a decisão de eclodir é uma decisão comportamental, uma vez que é necessário um movimento altamente energético; embriões que permanecem imóveis não eclodem, embora tenham atingido um estágio de desenvolvimento apropriado (Warkentin 1995; Warkentin et al. 2001). A perturbação mecânica é suficiente e necessária para induzir a eclosão rápida e síncrona, uma vez que o toque e o abanamento simultâneos dos ovos, cutucando fórceps na geléia circundante, resultam em eclosão rápida (Warkentin 1995). No entanto, os embriões de agalychnis callidryas não respondem a todos os distúrbios mecânicos por eclosão rápida (Warkentin 1995). Embriões de cinco dias de idade são insensíveis aos movimentos do substrato foliar causados simplesmente por tocar nas camadas de geleia de ovos, ou coletar e transportar garras de ovos, ou mesmo ventos fortes e chuva forte (Warkentin 1995). A plasticidade no tempo e sincronização da eclosão, particularmente a eclosão precoce, não é, portanto, simplesmente uma resposta à intensidade do estímulo mecânico (Warkentin 2000b), nem é uma resposta a pistas visuais ou químicas de predadores de cobras ou vespas, ou pistas como molhar a embreagem da precipitação (Warkentin 2005). Em vez disso, experimentos mostraram que os embriões de rãs de olhos vermelhos avaliam o padrão temporal das vibrações transmitidas por substrato ao tomar a decisão de eclodir (Warkentin 2005; Warkentin et al. 2006; Warkentin et al. 2007). Além disso, eles não eclodem O MAIS CEDO POSSÍVEL após a estimulação, mas esperam alguns segundos a minutos para avaliar as informações antes de decidir eclodir (Warkentin et al. 2007).

Cohen et al. (2016) mostraram que embriões arbóreos de agalychnis callidryas podem eclodir muito rapidamente (6,5 – 49 segundos) para escapar de ataques de cobras. Eles identificaram três estágios de eclosão: agitação e abertura pré-ruptura, ruptura da membrana vitelina perto do focinho e surra muscular para escapar. A microscopia eletrônica revelou glândulas de incubação densamente agrupadas no focinho que são preenchidas com vesículas que liberam seu conteúdo rapidamente na eclosão. A caracterização da enzima de incubação postulada ainda precisa ser realizada. Estudos comparativos das glândulas devem revelar diferenças entre os taxa para determinar se este ou outros mecanismos novos são empregados.

um videoclipe está disponível de embriões Agalychnis callidryas submetidos a eclosão acelerada resultante de ataque de cobra. O desenvolvimento de embriões Agalychnis callidryas é comumente predado por cobras (por exemplo., Leptodeira septentrionalis) (Warkentin 1995). O ataque de cobra induz os embriões a eclodirem até 30% mais cedo (já em cinco dias após a oviposição), rapidamente (dentro de segundos a minutos) e de forma relativamente síncrona, à medida que toda a embreagem choca em poucos minutos, em vez de vários dias (Warkentin 1995). Os embriões são capazes de distinguir entre o evento potencialmente letal de um ataque de cobra e o evento relativamente não perigoso de uma tempestade pela duração e tempo das vibrações resultantes (Warkentin et al. 2006). Quando as gravações vibracionais produzidas por um ataque de cobra ou por uma tempestade são editadas e reproduzidas, de modo que o tempo das vibrações se assemelha mais ao outro estímulo, a resposta de eclosão muda na direção esperada: maior para vibrações mais snakelike, menor para vibrações mais semelhantes à chuva (Warkentin et al. 2006). Os girinos entram pela primeira vez na água na eclosão, mudando seu habitat de Aéreo para aquático à medida que caem das folhas salientes às quais a ninhada de ovos foi presa (Pyburn 1963). Se não forem perturbados por cobras, os embriões tendem a atrasar a eclosão até os sete dias de idade, porque as larvas mais desenvolvidas são menos vulneráveis a predadores aquáticos, como camarão e peixe (Warkentin 1995; Warkentin 2005).

o desenvolvimento de embriões Agalychnis callidryas também é frequentemente vulnerável à predação por várias espécies diferentes de vespas polibidas (Warkentin 2000b; Warkentin et al. 2006). A predação da vespa, como a predação da cobra, induz a eclosão precoce e rápida de embriões de agalychnis callidryas (Warkentin 2000b). Curiosamente, o número de embriões que eclodem é diferente, dependendo do cenário de predação. Warkentin (2000b) relata que embriões eclodem individualmente ou em pequenos grupos (os agarrados por uma vespa, mais às vezes os vizinhos mais próximos) em resposta a vespas, que consomem um único embrião de cada vez, enquanto embreagens inteiras eclodem em resposta a cobras, que comem embreagens inteiras.Um vídeo com o trabalho de Karen Warkentin está disponível.

a infecção fúngica de garras de ovo Agalychnis callidryas por um ascomiceto filamentoso (família Phaeosphaeriaceae) também induz a eclosão precoce (Warkentin et al. 2001). Enquanto os ovos em embreagens não infectadas eclodem em uma ordem espacialmente aleatória, a eclosão em embreagens infectadas não é aleatória (Warkentin et al. 2001). Nas garras infectadas, os ovos que estão especificamente em contato direto com as hifas fúngicas eclodem cedo se tiverem pelo menos cinco dias de idade (Warkentin et al. 2001). Ovos vazios adjacentes podem formar uma “barreira” que o fungo normalmente não atravessa, permitindo que os embriões restantes continuem se desenvolvendo dentro da embreagem (Warkentin et al. 2001). Em contraste com a eclosão imediata e síncrona em resposta ao ataque de cobra ou vespa, as garras infectadas por fungos que estão em um estágio suficiente de desenvolvimento eclodem por um período de dias, mas em uma idade média mais jovem do que as garras saudáveis (Warkentin et al. 2001).

as larvas de Agalychnis callidryas têm brânquias externas extraordinariamente grandes e elaboradas para anuros, consistindo em um tronco branquial em cada lado do corpo, com uma fileira de filamentos ramificados (Pyburn 1963). A presença de guelras grandes e elaboradas provavelmente indicará limitação de oxigênio ao longo do desenvolvimento, especialmente porque os embriões dessa espécie se desenvolvem em ovos grandes e bem embalados em condições bastante quentes (Warkentin 2000A). As larvas mostram uma perda branquial externa surpreendentemente rápida na eclosão, com regressão branquial substancial ocorrendo tão rápido quanto três minutos após a eclosão (Warkentin 2000a). Girinos recém-nascidos respiram por meio de brânquias internas, bem como cutaneamente (Warkentin 2000a). O aumento do oxigênio ambientalmente disponível ao deixar o ovo demonstrou-se experimentalmente como o principal estímulo para a perda branquial externa nesta espécie, com o processo de eclosão desempenhando um papel secundário no desencadeamento da perda branquial (Warkentin 2000A). Uma vez que a presença de brânquias externas cria arrasto na água (Dudley et al. 1991), a rápida perda branquial no momento em que esses girinos entram pela primeira vez na água pode melhorar o desempenho da natação, o que poderia permitir a sobrevivência na exposição a predadores aquáticos (Warkentin 2000a). Nesta espécie (e provavelmente outros anuros com brânquias externas), a perda de brânquias externas na eclosão parece ser mediada por prostaglandinas da família E, ou PGEs (Warkentin e Wassersug 2001). Em contraste, a perda de brânquias internas é mediada pelo hormônio tireoidiano no momento da metamorfose (Shi 2000). Girinos de rãs de olhos vermelhos se suspendem verticalmente na coluna de água para se alimentar, com cabeças próximas à superfície da água (Savage 2002). Eles são principalmente alimentadores de filtro de coluna de água (Vonesh e Warkentin 2006). Gray e Nishikawa (1995) relataram que, em laboratório, os adultos Agalychnis callidryas preferiam grilos e mariposas como presas. Até onde sabemos, nenhum estudo de campo ainda foi publicado sobre a dieta de adultos desta espécie.

Ovos de Agalychnis callidryas são vulneráveis à predação por cobras arborícolas (como o gato de olhos de cobra, Leptodeira septentrionalis), várias espécies de polybid vespas (particularmente Polybia rejecta), macacos, e larvas da mosca (Hirtodrosophila batracida) (Warkentin 1995; Warkentin, 2000b; Warkentin et al. 2001; Warkentin et al. 2006). Além disso, os ovos são suscetíveis à mortalidade por infecção fúngica por um ascomiceto filamentoso (família Phaeosphaeriaceae) (Warkentin et al. 2001). Os girinos podem ser predados por predadores aquáticos como o camarão (Macrobrachium americanum) e peixes (Brachyraphis rhabdophora) (Warkentin 1995), bem como a gigante de água erros de forrageamento abaixo da superfície da água (Belostoma sp.) (Vonesh e Warkentin 2006). Froglets recém-metamorfoseados podem ser consumidos por Aranhas aquáticas forrageando na superfície da água ou acima dela (Thaumasia sp.) (Vonesh e Warkentin 2006). Predadores em sapos de Olhos Vermelhos juvenis e adultos incluem cobras (Warkentin 1995), bem como pássaros e morcegos (Leenders 2001).

embora os sapos filomedusina (reprodução de folhas) não tenham o mesmo tipo de compostos altamente tóxicos que outros sapos de cores vivas, como os dendrobatídeos, sua pele contém altos níveis de peptídeos biologicamente ativos (Mignogna et al. 1997). A pele de Agalychnis callidryas demonstrou conter cinco famílias diferentes de peptídeos biologicamente ativos: taquicininas, bradicininas, caeruleína, peptídeos opióides (dermorfina e dermorfina) e sauvagina (Mignogna et al. 1997).

além de as larvas serem capazes de sentir vibrações, agora foi demonstrado que os sapos machos adultos de olhos vermelhos também usam sinalização vibracional, em interações agressivas macho-macho (Caldwell et al., 2010). Os autores apontam que as vibrações do substrato podem ser muito mais importantes na comunicação por vertebrados arbóreos do que havia sido realizado anteriormente. Durante as competições sobre as fêmeas, os sapos machos de Olhos Vermelhos emitem chamadas de “risada” e realizam exibições de tremulação sacudindo um galho rapidamente com as patas traseiras. Tremulações só ocorreram quando dois machos estavam dentro de 2 m um do outro ou estavam na mesma planta, e muitas vezes eram imediatamente seguidos de luta livre. Para testar se as vibrações eram importantes, várias combinações de monitores foram feitas usando um sapo robótico em uma moldura de madeira perto de um galho ocupado por um sapo vivo, além de um agitador no galho onde o sapo vivo estava sentado. Em alguns testes, o sapo robótico moveu-se para cima e para baixo, para uma exibição visual, mas nenhum tremor de ramo foi feito; em outros, o ramo foi vibrado, mas o sapo robótico não se moveu; e em alguns testes, foram feitas exibições visuais e Vibracionais. Os machos vivos responderam agressivamente a todas as exibições, tanto visuais quanto vibracionais, mas apenas sacudiram seu próprio ramo quando as vibrações foram sentidas do agitador (Caldwell et al. 2010).

tendências e ameaças
esta espécie pode tolerar alguma modificação do habitat, como em áreas onde a extração seletiva de madeira foi feita, mas acredita-se que não seja capaz de viver onde a floresta foi fortemente degradada (Stuart et al. 2008). No entanto, McCranie et al. (2003) relatório finding agalychnis callidryas eggs and tadpoles in a wide variety of breeding sites in Honduras, including some in pesadamente desmatadas áreas (see Life History section above for a description).

todas as cinco espécies de Agalychnis (A. annae, A. callidryas, A. moreletii, A. saltator e A. spurrelli) estão agora sob proteção da CITES, sob o Apêndice II (em 21 de Março de 2010). Somente na última década, os EUA importaram 221.960 sapos Agalychnis, de acordo com a rede de sobrevivência de espécies (SSN).

relação com os seres humanos
rãs de olhos vermelhos são populares no comércio de animais de estimação, e pode ser criado em cativeiro sob condições adequadas.

o número diploide de cromossomos é 26 para Agalychnis callidryas (Duellman e Cole 1965).

uma conta de espécies de língua espanhola pode ser encontrada no site do Instituto Nacional de Biodiversidade (INBio).

Briggs, V. S. (2008). “Padrões de acasalamento de árvores de olhos vermelhos, Agalychnis callidryas e A. moreletii.”Ethology, 114, 489-498.

Caldwell, M. S., Johnston, G. R., McDaniel, J. G., e Warkentin, K. M. (2010). “Sinalização vibracional nas interações agonísticas das árvores de olhos vermelhos.”Current Biology, doi:10.1016 / j. cub.2010.03.069.

Cohen, K. L., Seid, M. A., Warkentin, K. M., (2016). “Como os embriões escapam do perigo: o mecanismo de eclosão rápida e plástica em árvores de olhos vermelhos.”Journal of Experimental Biology, 219, 1875-1883.

Cope, E. D. (1862). “Catálogo dos répteis obtidos durante as explorações dos rios Paraná, Paraguai, Vermejo e Uruguai, pelo Capitão Thos. J. Page, U. S. N., e daqueles adquiridos por Lieut. N. Michler, Top dos EUA. Eng., Comandante da expedição que conduz a pesquisa.”Proceedings of the Academy of Natural Sciences of Philadelphia, 14, 346-359.

D’Orgeix, C. A., and Turner, B. J. (1995). “Paternidade múltipla na treefrog Agalychnis callidryas de olhos vermelhos (Cope).”Ecologia Molecular, 4, 505-508.

Donnelly, M., and Guyer, C. (1994). “Padrões de reprodução e uso de habitat em uma assembléia de sapos hílidas neotropicais.”Oecologia, 98, 291-302.

Dudley, R., King, V. A., and Wassersug, R. J. (1991). “As implicações da forma e metamorfose para as forças de arrasto em um girino de Lagoa generalizada (Rana catesbeiana).”Copeia, 1991, 252-257.

Duellman, W. E. (1967). “Mecanismos de isolamento do namoro em sapos hílidas da Costa Rica.”Herpetologica, 23(3), 169-183.

Duellman, W. E. (1963). “Anfíbios e répteis da floresta tropical do Sul de El Petén, Guatemala.”University of Kansas Publications, Museum of Natural History, 15, 205-249.

Duellman, W. E. (2001). As rãs Hílidas da América média. Sociedade para o estudo de anfíbios e Répteis, Ithaca, Nova York.

Duellman, W. E., and Cole, C. J. (1965). “Estudos de cromossomos de alguns anfíbios anuranos.”Zoologia Sistemática, 14 (2), 139-143.

Fouquette, M. J., Jr. (1968). “Algumas rãs hílidas da zona do Canal, com referência especial à estrutura de chamada.”Caribbean Journal of Science, 6( 3-4), 167-172.

Gray, L. A., and Nishikawa, K. C. (1995). “Alimentando a cinemática das rãs filomedusinas.”The Journal of Experimental Biology, 198, 457-463.

Gray, L. A., and Rand, A. S. (1997). “A Daybreak chorus in the frog, Agalychnis callidryas.”Journal of Herpetology, 31( 3), 440-441.

Leenders, T. (2001). Um guia para Anfíbios e répteis da Costa Rica. Zona Tropical, Miami.

McCranie, J. R., Wilson, L. D., and Townsend, J. H. (2003). “Agalychnis callidryas (Treefrog de olhos vermelhos). Reproducao.”Herpetological Review, 34(1), 43.

Mignogna, G., Severina, C., Erspamer, G. F., Siciliano, R., Kreil, G., and Barra, D. (1997). “Taquicininas e outros peptídeos biologicamente ativos da pele da rà filomedusida da Costa Rica Agalychnis callidryas.”Peptídeos, 18(3), 367-372.

Pyburn, W. F. (1963). “Observações sobre a história de vida da treefrog, Phyllomedusa callidryas (Cope).”Texas Journal of Science, 15, 155-170.

Pyburn, W. F. (1964). “Comportamento de reprodução da folha-sapo, Phyllomedusa callidryas, no sul de Veracruz.”The American Philosophical Society Yearbook, 1964, 291-294.

Pyburn, W. F. (1970). “Comportamento de reprodução das folhas-sapos Phyllomedusa callidryas e Phyllomedusa dacnicolor no México.”Copeia, 2, 209-218.

Roberts, W. E. (1994). “Explosive breeding aggregations and parachuting in a neotropical frog, Agalychnis saltator (Hylidae).”Journal of Herpetology, 28(2), 193-199.

Ruiz-Carranza, P. M., Ardila-Robayo, M. C., e Lynch, J. D (1996). “Lista atualizada de la fauna de Amphibia de Colombia.”Revista de la Academia Colombiana de Ciências Exatas, Físicas y Naturales, 20(77), 365-415.

Savage, J. M. (2002). Os anfíbios e répteis da Costa Rica: uma herpetofauna entre dois continentes, entre dois mares. University of Chicago Press, Chicago, Illinois, EUA e Londres.

Shi, Y-B. (2000). Metamorfose anfíbia: da morfologia à Biologia Molecular. Wiley-Liss, Inc., Paulo.

Starrett, P. (1960). “Descrições de girinos de sapos da América média.”Miscellaneous Publications Museum of Zoology, University of Michigan, 110, 5-37.Stuart, S., Hoffmann, M., Chanson, J., Cox, N., Berridge, R., Ramani, P., Young, B. (eds) (2008). Anfíbios ameaçados do mundo. Lynx Edicions, IUCN e Conservation International, Barcelona, Espanha; Gland, Suíça; e Arlington, Virgínia, EUA.

Valerio, C. E. (1971). “Capacidade de alguns girinos tropicais sobreviverem sem água.”Copeia, 1971(2), 364-365.

Vonesh, J. R., e Warkentin, K. M. (2006). “Mudanças opostas de tamanho na metamorfose em resposta a predadores larvais e metamorfos.”Ecologia, 87( 3), 556-562.

Warkentin, K. M. (1995). Plasticidade adaptativa na idade de incubação: uma resposta às compensações de risco de predação.”Proceedings of the National Academy of Sciences, 92, 3507-3510.

Warkentin, K. M. (2000). “Efeitos ambientais e de desenvolvimento na perda branquial externa na RÃ – de-Olhos-Vermelhos, Agalychnis callidryas.”Zoologia fisiológica e Bioquímica, 73( 5), 557-565.

Warkentin, K. M. (2000). “Predação de vespa e eclosão induzida por Vespa de ovos de trevo de olhos vermelhos.”Comportamento Animal, 60, 503-510.

Warkentin, K. M. (2002). “Tempo de incubação, disponibilidade de O2 e regressão branquial externa no treefrog, Agalychnis callidryas.”Zoologia fisiológica e Bioquímica, 75, 155-164.

Warkentin, K. M. (2005). “Como os embriões avaliam o risco? Sinais vibracionais na eclosão induzida por predadores de árvores de olhos vermelhos.”Comportamento Animal, 70, 59-71.

Warkentin, K. M., Buckley, C. R., and Metcalf, K. A. (2006). “O desenvolvimento de ovos treefrog de olhos vermelhos afeta a eficiência e as escolhas das vespas de forrageamento de ovos.”Comportamento Animal, 71, 417-425.

Warkentin, K. M., Caldwell, M. S., Siok, T. D., D’Amato, A. T., and McDaniel, J. G. (2007). “Amostragem flexível de informações na avaliação vibracional do risco de predação por embriões de treefrog de olhos vermelhos.”The Journal of Experimental Biology, 210, 614-619.

Warkentin, K. M., Caldwell, M. S., and McDaniel, J. G. (2006). “Pistas de padrão Temporal na avaliação de risco vibracional por embriões do treefrog de olhos vermelhos, Agalychnis callidryas.”Journal of Experimental Biology, 209, 1376-1384.

Warkentin, K. M., Currie, C. R., and Rehner, S. A. (2001). “O fungo que mata ovos induz a eclosão precoce de ovos treefrog de olhos vermelhos.”Ecology, 82(10), 2860-2869.

Warkentin, K. M., and Wassersug, R. J. (2001). “As prostaglandinas regulam a regressão branquial externa nos anuranos?”Journal of Experimental Zoology, 289, 366-373.

originalmente enviado por: Kellie Whittaker (primeiro publicado 2007-07-26)
Editado por: Filipa Whittaker, Serra Raby e David serviço de Despertar, Michelle Koo (2017-06-15)

Espécies Conta Citação: AmphibiaWeb 2017 Agalychnis callidryas: Vermelho com olhos Multicoloridos Treefrog <https://amphibiaweb.org/species/616> Universidade da Califórnia, Berkeley, CA, EUA. Acessado Em 30 De Dezembro De 2021.

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